RAS Chemistry & Material ScienceЖурнал прикладной химии Russian Journal of Applied Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-4618
  • ISSN (Online) 3034-5545

ВЛИЯНИЕ ГИБРИДНОГО УГЛЕРОД-СИЛИКАТНОГО НАНОМАТЕРИАЛА НА СВОЙСТВА СИЛОКСАНОВЫХ РЕЗИН

PII
S30345545S0044461825040023-1
DOI
10.7868/S3034554525040023
Publication type
Article
Status
Published
Authors
Volume/ Edition
Volume 98 / Issue number 4
Pages
257-263
Abstract
Методами прямого растворения, осаждения и самоорганизации получены наночастицы на основе альдегидсодержащих производных крахмала, основные размерные и структурные характеристики которых определены методами динамического светорассеяния и сканирующей электронной микроскопии. Введение альдегидных групп в состав нативного крахмала и гидроксиэтилкрахмала осуществляли путем окисления водным раствором периодата натрия при различных мольных соотношениях реагентов. Установлено, что средний диаметр наночастиц диальдегидкрахмала и диальдегидгидроксиэтилкрахмала, сформированных методом самоорганизации (70 до 100 нм), меньше средних размеров наночастиц, полученных методами прямого растворения и осаждения (190–250 нм), при этом коллоидная суспензия гидрофобизированных производных крахмала характеризуется более узким распределением наночастиц по размерам (
Keywords
Date of publication
01.01.2026
Year of publication
2026
Number of purchasers
0
Views
48

References

  1. 1. Eloy J. O., Abriata J. P., Marchetti J. M. (Eds). Nanocarriers for drug delivery: Сoncepts and applications. Cham: Springer Nature Switzerland AG, 2021. 450 p.. https://doi.org/10.1007:978-3-030-63389-9
  2. 2. Бовина Е. М., Романов Б. К., Казаков А. С., Вельц Н. Ю., Журавлева Е. О., Букатина Т. М., Аляутдин Р. Н., Меркулов В. А. Наноразмерные лекарственные средства: особенности оценки безопасности // Безопасность и риск фармакотерапии. 2019. Т. 7. № 3. С.127–138.. https://doi.org/10.30895/2312-7821-2019-7-3-127-138 @@Bovina E. M., Romanov B. K., Kazakov A. S., Velts N. Yu., Zhuravleva E. O., Bukatina T. M., Alyautdin R. N., Merkulov V. A. Nanoscale therapeutic system: Safety assessment features // Safety and Risk of Pharmacotherapy. 2019. V. 7. N 3. P. 127–138.. https://doi.org/10.30895/2312-7821-2019-7-3-127-138.
  3. 3. Anselmo A. C., Mitragotri S. Nanoparticles in the clinic: An update // BioTM. 2019. V. 4. N 1. P. 1–16.. https://doi.org/10.1002/btm2.10143
  4. 4. Namiot E. D., Sokolov A. V., Chubarev V. N., Tarasov V. V., Schioth H. B. Nanoparticles in clinical trials: Analysis of clinical trials, FDA approvals and use for COVID-19 vaccines // Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. N 1. ID 787. https://doi.org/10.3390/ijms24010787
  5. 5. Wang H., Hu H., Yang H., Li Z. Hydroxyethyl starch based smart nanomedicine // RSC Advances. 2021. V. 11. P. 3226–3240.. https://doi.org/10.1039/D0RA09663F
  6. 6. Torres F. G., De-la-Torre G. E. Synthesis, characteristics, and applications of modified starch nanoparticles: A review // Int. J. Biol. Macromol. 2022. V. 194. P. 289–305.. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2021.11.187
  7. 7. Ahmed R., Gardouha B., Ahmed S. G., Srag El-D., Mostafa Y., Gada S. Formulation factors of starch-based nanosystems preparation and their pharmaceutical application // RPBS. 2021. V. 5. N 3. P. 28–39. https://doi.org/10.21608/rpbs.2020.51097.1080
  8. 8. Qin Y., Liu C., Jiang S., Xiong L., Sun Q. Characterization of starch nanoparticles prepared by nanoprecipitation: Influence of amylose content and starch type // Ind. Crop. Prod. 2016. V. 87. P. 182–190. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2016.04.038
  9. 9. Chandra K., Dutta S., Kolya H., Kang C. W. Structural aspect of hydroxyethyl-starch-anticancer-drug-conjugates as state-of-the-art drug carriers // Sci. Pharm. 2023. V. 91. N 3. ID 32.. https://doi.org/10.3390/scipharm91030032
  10. 10. Chong W. H., Chin S. F., Pang S. C., Kok K. Y. Synthesis and characterisation of piperine loaded starch nanoparticles // J. Phys. Sci. 2020. V. 31. N 1. P. 57–68. https://doi.org/10.21315/jps2020.31.1.4
  11. 11. Chen Y., Hao Y., Ting K., Li Q., Gao Q. Preparation and emulsification properties of dialdehyde starch nanoparticles // Food Chem. 2019. V. 286. P. 467–74. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2019.01.188
  12. 12. Иозеп А. А., Григорьев А. А., Лашкевич Н. В. Реакции декстранполиальдегида с гетероциклическими соединениями // ЖПХ. 1999. Т. 72. № 7. С. 1165–1168 @@Iozep A.A., Suvorova O.B., Lebedko A.V., Passet B.V. Reactions of dextranpolyaldehyde with heterocyclic compounds // J. Appl. Chem. 1999. T. 72. N. 7. P. 1165–1168.
  13. 13. Xiao S. Y., Liu X. M., Tong C. Y., Zhao L. C., Liu X. J., Zhou A. M., Cao Y. Dialdehyde starch nanoparticles as antitumor drug delivery system: An in vitro, in vivo and immunohistological evaluation // Chin. Sci. Bull. 2012. V. 57. N 24. P. 3226–3232.. https://doi.org/10.1007/s11434-012-5342-5
  14. 14. Bagheri S., Hassani S. M., Mahdizadeh S. J. Computational procedure for determining physicochemical properties of doxorubicin dialdehyde starch (DOX-DAS) and doxorubicin-dialdehyde starch nanoparticles (DOX-DASNP) // Int. J. Pharm. Pharm. Sci. 2012. V. 4. N 1. P. 640–642.
  15. 15. Yu D. M., Xiao S. Y., Tong C. Y., Chen L., Liu X. M. Dialdehyde starch nanoparticles: Preparation and application in drug // Chin. Sci. Bull. 2007. V. 52. N 21. P. 2913–2918.
  16. 16. Saari H., Fuentes C., Sjöö M., Rayner M., Wahlgren M. Production of starch nanoparticles by dissolution and non-solvent precipitation for use in food-grade Pickering emulsions // Carbohydr. Polym. 2017. V. 157. P. 558–566.. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2016.10.003
  17. 17. Bilati U., Allémann E., Doelker E. Development of a nanoprecipitation method intended for the entrapment of hydrophilic drugs into nanoparticles // Eur. J. Pharm. Sci. 2005. V. 24. N 1. P. 67–75.. https://doi.org/10.1016/j.ejps.2004.09.011
  18. 18. Wasiak I., Kulikowska A., Janczewska M., Michalak M., Cymerman I. A., Nagalski A., Kallinger P., Szymanski W. W., Ciach T. Dextran nanoparticle synthesis and properties // PLoS ONE. 2016. V. 11. N 1. ID e0146237.. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0146237
  19. 19. Yu J., Chang P. R., Ma X. The preparation and properties of dialdehyde starch and thermoplastic dialdehyde starch // Carbohydr. Polym. 2010. V. 79. N 2. P. 296–300.. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2009.08.005
  20. 20. Maia J., Evangelista M. B., Gil H., Ferreira L. Dextran-based materials for biomedical applications // Carbohydrates Applications in Medicine / Ed. M. H. Gil. 2014. P. 31–53.
  21. 21. Mo X., Iwata H., Matsuda S., Ikada Y. Soft tissue adhesive composed of modified gelatin and polysaccharides // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 2000. V. 11. N 4. P. 341–351.. https://doi.org/10.1163/156856200743742
  22. 22. Rodriguez-Loya J., Lerma M., Gardea-Torresdey J. L. Dynamic light scattering and its application to control nanoparticle aggregation in colloidal systems: A review // Micromachines (Basel). 2023. V. 15. N 1. ID 24. https://doi.org/10.3390/mi15010024
  23. 23. Lee J., Park S., Roh H. G., Oh S., Kim S., Kim M., Kim D., Park J. Preparation and characterization of superabsorbent polymers based on starch aldehydes and carboxymethyl cellulose // Polymers. 2018. V. 10. N 6. ID 605.. https://doi.org/10.3390/polym10060605
  24. 24. Юркштович Т. Л., Голуб Н. В., Костерова Р. И., Пристромова Ю. И., Алиновская В. А. Нано­частицы на основе альдегидсодержащих полисахаридов в качестве носителей биологически активных веществ // Свиридовские чтения. 2024. № 1. С. 140–142.
  25. 25. Sana S., Boodhoo K., Zivkovic V. Production of starch nanoparticles through solvent-antisolvent precipitation in a spinning disc reactor // Green Process. Synth. 2019. V. 8. P. 507–515.. https://doi.org/10.1515/gps-2019-0019
  26. 26. Кузнецова Е. В., Кузнецов Н. М., Калинин К. Т., Лебедев-Степанов П. В., Новиков А. А., Чвалун С. Н. Роль комплексного подхода при определении размеров наночастиц в дисперсиях // Коллоид. журн. 2022. Т. 84. № 6. С. 740–751.. https://doi.org/10.31857/S0023291222600389 @@Kuznetsova E. V., Kuznetsov N. M., Kalinin K. T., Lebedev-Stepanov P. V., Novikov A. A., Chvalun S. N. The role of integrated approach in the determination of nanoparticle sizes in dispersions // Colloid J. 2022. V. 84. N 6. P. 704–714.. https://doi.org/10.1134/S1061933X22600348.
  27. 27. Monopoli M. P., Aberg C., Salvati A., Dawson K. A. Colloidal stability of polymeric nanoparticles in biological fluids // J. Nanopart. Res. 2012. V. 14. ID 920. https://doi.org/10.1007/s11051-012-0920-7
  28. 28. Danaei M., Dehghankhold M., Ataei S., Hasanzadeh Davarani F., Javanmard R., Dokhani A., Khorasani S., Mozafari M. R. Impact of particle size and polydispersity index on the clinical applications of lipidic nanocarrier systems // Pharmaceutics. 2018. V. 10. N 2. 57.. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics10020057
  29. 29. Hebeish A., El-Rafie M. H., El-Sheikh M. A., El-Naggar M. E. Ultra-fine characteristics of starch nanoparticles prepared using native starch with and without surfactant // J. Inorg. Organomet. Polym. Mater. 2014. V. 24. P. 515–524.. https://doi.org/10.1007/s10904-013-0004-x
  30. 30. Koniuch N., Ilett M., Collins S. M., Hondow N., Brown A., Hughes L., Blade H. Structure of polymeric nanoparticles encapsulating a drug — pamoic acid ion pair by scanning transmission electron microscopy // Heliyon. 2023. V. 9. N 6. ID 16959.. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e16959
QR
Translate

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Higher Attestation Commission

At the Ministry of Education and Science of the Russian Federation

Scopus

Scientific Electronic Library