References

1. 1. Lee K. Y., Mooney D. J. Alginate: Properties and biomedical applications // Progress Polym. Sci. 2012. V. 37. N 1. P. 106–126. https://doi.org/10.1016/j.progpolymsci.2011.06.003
2. 2. Guo X., Wang Y., Qin Y., Shen P., Peng Q. Structures, properties and application of alginic acid: A review // Int. J. Biol. Macromol. 2020. V. 162. P. 618–628. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2020.06.180
3. 3. Sellimi S., Younes I., Ayed H.B., Maalej H., Montero V., Rinaudo M., Dahia M., Mechichi T., Hajji M., Nasri M. Structural, physicochemical and antioxidant properties of sodium alginate isolated from a Tunisian brown seaweed // Int. J. Biol. Macromol. 2015. V. 72. P. 1358–1367. http://dx.doi.org/doi:10.1016/j.ijbiomac.2014.10.016
4. 4. Szekalska M., Puciłowska A., Szymańska E., Ciosek P., Winnicka K. Alginate: Current use and future perspectives in pharmaceutical and biomedical applications // Int. J. Polym. Sci. 2016. 7697031. http://dx.doi.org/10.1155/2016/7697031
5. 5. Varaprasad K., Jayaramudu T., Kanikireddy V., Toro C., Sadiku E. R. Alginate-based composite materials for wound dressing application: A mini review // Carbohydrate Polym. 2020. V. 236. 116025. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2020.116025
6. 6. Cui R., Zhang L., Ou R., Xu Y., Xu L., Zhan X.Y., Li D. Polysaccharide-based hydrogels for wound dressing: Design considerations and clinical applications // Front Bioeng. Biotechnol. 2022. V. 10. 845735. https://doi.org/10.3389/fbioe.2022.845735
7. 7. Sohn E. J., Ahn H. B., Roh M. S., Ryu W. Y., Kwon Y. H. Efficacy of temperature-sensitive guardix-SG for adhesiolysis in experimentally induced eyelid adhesion in rabbits // Ophthalmic Plastic & Reconstructive Surgery. 2013. V. 29. N 6. P. 458–463. https://doi.org/10.1097/IOP.0b013e3182a22bae
8. 8. Krasnopeeva E. L., Panova G. G., Yakimansky A. V. Agricultural applications of superabsorbent polymer hydrogels // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. N 23. 15134. https://doi.org/10.3390/ijms232315134
9. 9. Ji-Sheng Y., Ying-Jian X., Wen H. Research progress on chemical modification of alginate: A review // Carbohydrate Polym. 2011. V. 84. P. 33–39. https://doi:10.1016/j.carbpol.2010.11.048
10. 10. Rowbotham J. S., Greenwell H. C., Dyer P. W. Opening the Egg Box: NMR spectroscopic analysis of the interactions between s-block cations and kelp monosaccharides // Dalton Trans. 2003. 2021. V. 50. N 38. P. 13246–13255. https://doi.org/10.1039/d0dt04375c
11. 11. Voropaiev M., Nock D. Onset of acid-neutralizing action of a calcium/magnesium carbonate-based antacid using an artificial stomach model: An in vitro evaluation // BMC Gastroenterol. BioMed Central, 2021. V. 21. N 1. 112. https://doi.org/10.1186/s12876-021-01687-8
12. 12. Tardivo J. P., Del Giglio A., de Oliveira C. S., Gabrielli D. S., Junqueira H. C., Tada D. B., Severino D., Turchiello R. de F., Baptista M. S. Methylene blue in photodynamic therapy: From basic mechanisms to clinical applications // Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2005. V. 2. N 3. P. 175–191. https://doi.org/10.1016/S1572-1000 (05)00097-9
13. 13. Er Karaoğlu G., Uğurydın Z., Erdönmez D., Göl C., Durmuş M. Efficacy of antimicrobial photodynamic therapy administered using methylene blue, toluidine blue and tetra 2-mercaptopyridine substituted zinc phthalocyanine in root canals contaminated with Enterococcusaecalis // Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2020. V. 32. 102038. https://doi.org/10.1016/j.pdpdt.2020.102038
14. 14. Lotufo M. A., Tempestini Horliana A. C. R., Santana T., de Queiroz A. C., Gomes A. O., Motta L. J., Ferrari R. A. M., dos Santos Fernandes K. P., Bussadori S. K. Efficacy of photodynamic therapy on the treatment of herpes labialis: A systematic review // Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2020. V. 29. 101536. https://doi.org/10.1016/j.pdpdt.2019.08.018
15. 15. Кокшаров С. А. Алеева С. В., Лепилова О. В., Кричевский Г. Е., Фидоровская Ю. С. Свойства гидроколлоидов альгината натрия при сорбционном связывании папаина // Коллоид. журн. 2021. Т. 83. № 6. С. 660–675. https://doi.org/10.31857/S0023291221060070
16. 16. Бычичко Д. Ю. Разработка гемостатических покрытий локального действия на основе натуральных полисахаридов: альгината натрия и каппа-каррагинана (экспериментальное исследование): специальность 14.03.06 «Фармакология, клиническая фармакология»: Диссертация на соискание уч. ст. канд. мед. наук. М., 2022. 186 с.
17. 17. Lin N., Bruzzese C., Dufresne A. Ttmpo-oxidized nanocellulose participating as crosslinking aid for alginate-based sponges // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2012. V. 4. N 4. P. 4948–4959. https://dx.doi.org/10.1021/am301325r
18. 18. Kurmaz S. V., Fadeeva N. V., Gorshkova A. I., Kurochkin S. A., Knerelman E. I., Davydova G. I., Torbov V. I., Dremova N. N., Konev D. V., Kurmaz V. A., Ignatiev V. M., Emelyanova N. S. Mesoporous networks of N-vinylpyrrolidone with (di) methacrylates as precursors of ecological molecular imprinted polymers // Materials. 2021. V. 14. 6757. https://doi.org/10.3390/ma14226757
19. 19. Курмаз С. В., Фадеева Н. В., Кнерельман Е. И., Давыдова Г. И. Получение пористых полимерных сеток N-винилпирролидона с диметакрилатом триэтиленгликоля и определение их удельной площади поверхности с помощью бенгальского розового // ЖПХ. 2018. Т. 91. № 1. С. 115–122
20. 20. Kurmaz S. V., Fadeeva N. V., Knerelman E. I., Davydova G. I. Preparation of porous polymer networks of N-vinylpyrrolidone with triethylene glycol dimethacrylate and determination of their specific surface area using Rose Bengal dye // Russ. J. Appl. Chem. 2018. V. 91. P. 105–112. http://dx.doi.org/10.1134/s1070427218010172].
21. 21. Chandía N. P., Matsuhiro B. Characterization of a fucoidan from Lessonia vadosa (Phaeophyta) and its anticoagulant and elicitor properties // Int. J. Biol. Macromol. 2008. V. 42. N 3. P. 235–240. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2007.10.023
22. 22. Soares J. P., Santos J. E., Chierice G. O., Cavalheiro É. T. G. Thermal behavior of alginic acid and its sodium salt // Ecletica Quimica. 2004. V. 29. N 2. P. 53–56. www.scielo.br/eq
23. 23. Белозерская Г. Г., Бычичко Д. Ю., Кабак В. А., Лемперт А. Р., Неведрова О. Е., Малыхина Л. С., Миронов М. С., Логвинова Ю. С., Голубев Е. М., Широкова Т. И., Вдовин В. М., Момот А. П. Создание новых гемостатических покрытий локального действия на основе альгината натрия // Клиническая физиология кровообращения. 2018. Т. 15. № 3. С. 222–229. https://doi.org/10.24022/18146910-2018-15-3-222-229
24. 24. Khoshmohabat H., Paydar S., Kazemi H. M., Dalfardi B. Overview of agents used for emergency hemostasis // Trauma Mon. 2016. V. 21. N 1. P. e26023. https://doi.org/10.5812/traumamon.26023
25. 25. Шелковский В. С. Использование окислительно-восстановительных и агрегационных свойств красителя метиленового синего в нанобиофизических исследованиях // Биофиз. вестн. 2015. № 33. С. 5–9
26. 26. Shelkovsky V. S. Redox interactions of methylene blue with cysteine amino acid as a possible mechanizm of biological action of the dye // Biophys. Bull. 2017. V. 1. N 37. https://doi.org/10.26565/2075-3810-2017-37-04
27. 27. Salimi A., Roosta A. Experimental solubility and thermodynamic aspects of methylene blue in different solvents // Thermochim. Acta. 2019. V. 675. P. 134–139. https://doi.org/10.1016/j.tca.2019.03.024
28. 28. Selvam S., Sarkar I. Bile salt induced solubilization of methylene blue: Study on methylene blue fluorescence properties and molecular mechanics calculation // J. Pharmaceutical Analysis. 2017. V. 7. N 1. P. 71–75. https://doi.org/10.1016/j.jpha.2016.07.006
29. 29. Ho Y. S., McKay G. Pseudo-second order model for sorption processes // Process Biochem. 1999. V. 34. N 5. P. 451–465. https://doi.org/10.1016/S0032-9592 (98)00112-5
30. 30. Ho Y. S., Mckay G. The kinetics of sorption of basic dyes from aqueous solution by sphagnum moss peat // Canad. J. Chem. Eng. 1998. V. 76. P. 822–827. https://doi.org/10.1002/cjce.5450760419